Page 104 - 《水产学报》2026年第3期
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3 期                                     水    产    学    报                                 50 卷


                Control              Heat                      子-细胞因子受体相互作用、糖酵解/糖异生及肌动
                                                               蛋白细胞骨架调控。

                                                                3    讨论

                50 μm              1  50 μm             2          水产养殖业正面临全球变暖的巨大威胁,了
                Control              Heat                      解  CHS  对鱼类能量代谢的调节机制将有助于制定
                                                               应对策略。能量是鱼类维持细胞乃至组织正常生
                                                               理功能的物质基础,保持能量稳态对鱼类在极端
                                                               环境下维持自身健康及存活尤为重要 。鱼类能
                                                                                                [30]
                5 μm               3  5 μm              4      量代谢易受水温影响,水温过高或过低均可使其

                                                               能量代谢紊乱并造成组织损伤             [31-32] 。糖脂代谢是鱼
              图版 Ⅱ    CHS  下大口黑鲈肝脏油红       O  染色及  TEM  观察
                                                               类获取能量的主要来源,正常的糖脂代谢对维持
              1~2  及  3~4  分别示  Control 组与  Heat 组大口黑鲈肝脏油红  O  染色
              及  TEM  观察;黑色箭头示脂质沉积。                            能量平衡至关重要。IRA、IRB            及  IRS1  是胰岛素
                     Plate Ⅱ Hepatic oil red O staining and    分泌调控通路关键基因,并经下游                PI3K/AKT  通路
                                                                                                        [33]
                   TEM observation of M. salmoides under CHS   广泛参与糖原合成、分解及糖异生等生物过程 。
              1-2 and 3-4 show the hepatic oil red O staining TEM observation of Con-  及  上调通常被认为可促进胰岛素
                                                               IRA、IRB    IRS1
              trol and Heat groups, respectively; black arrows indicate lipid droplets.  [26]
                                                               分泌进而加速葡萄糖摄入 ,PBP1              则与胰岛素敏
               2.4    肝脏炎症相关基因表达                               感性密切相关。此外,AKT            及其下游    GSK3β 上调
                                                                                        [34]
                   肝脏炎症相关基因表达分析显示,Heat 组大                      则被视为糖原合成增强信号 ,PEPCK                表达水平
                                                                                    [35]
              口黑鲈肝脏      IκBβ、P65  及  Iκκβ 表达量均显著低于            则与糖异生强度呈正比 。在本研究中,Heat 组
              Control 组  (P<0.05),IL-8  表达量极显著低于      Con-     大 口 黑 鲈 肝 脏    IRA、 IRB、 IRS1、 PBP1、 AKT、
              trol 组  (P<0.001) (图  4)。                        GSK3β 及  PEPCK  表达均显著下调,表明           CHS  不
                                                               仅抑制了大口黑鲈摄取葡萄糖的能力,还抑制了
               2.5    肝脏转录组学分析
                                                               肝脏糖异生及糖原合成。此外,Heat 组大口黑鲈
                   本次测序     8  个肝脏样品共获取         175 728 401    肝脏糖原蓄积加剧揭示了            CHS  对糖原分解代谢的
              条  clean reads,每个样品平均获取          21 966 050  条   抑制作用,而糖原蓄积增加对糖摄入、糖异生及
              clean reads。转录组测序数据集已上传至                NCBI     糖原合成的负反馈调节同样合理解释了相关基因
              SRA  数据库   (https://submit.ncbi.nlm.nih.gov/subs/sra,  表达下调。与本研究结果相似,肝脏糖原蓄积同
              项目号:PRJNA1347746)。第一主成分              (PCA) 分     样下调了拟穴青蟹        (Scylla paramamosain) [36]  胰岛素
              析显示,Control 组及      Heat 组大口黑鲈肝脏转录组              分泌信号通路相关基因表达。
              测序数据集被明显区分           (图  5-a),聚类热图分析结                脂质代谢对维持细胞内能量稳态同样不可或
              果表明各组样本组内重复性良好                (图  5-b)。本次测       缺 。尤其是在糖代谢紊乱时,脂肪氧化代偿供
                                                                 [37]
              序,Heat 组与    Control 组间共筛选出      3 262  个差异      能对维持细胞稳态尤为重要。在正常情况下,肝
              表达基因      (DEGs),其中    1 119  个基因表达下调,           内脂肪被快速周转而避免在胞内沉积,包括脂肪
              2 143  个基因表达上调      (图  5-c~d)。                  合成、分解及氧化等生物过程。ACC                脂肪酸合成
                   对  DEGs 进 行   GO  功 能 分 类   (图  6-a~b) 及    限速酶是脂肪酸合成限速酶,其表达上调通常伴
                                                                                          [38]
              KEGG  通路富集分析        (图  6-c~d)。结果显示,GO           随  FAS  上调进而加速脂肪合成 。FAS            表达同样
              功能分类前      10  分别为免疫应答、免疫应答的调节、                  受  AMPKα/SIRT1  通路调节,AMPKα/SIRT1      上调可
              细胞黏附的正向调控、免疫系统过程调控、细胞                            抑制  FAS 表达以增强脂肪分解效应 。因此,本
                                                                                              [39]
              黏附调控、细胞激活调控、免疫系统过程、整合                            研究中    Heat 组大口黑鲈肝脏       FAS  与  ACC  相反表
              素介导的信号通路、细胞运动的正向调控及细胞                            达模式与    AMPKα/SIRT1  通路激活相关。此外,肝
              表面受体信号通路;KEGG             通路富集分析前        5  分    脏脂肪积累加剧可能通过负反馈机制抑制                    FAS  表
              别为   C  型凝集素受体信号通路、碳代谢、细胞因                       达。ACC   上调对脂肪酸氧化         CPT-1/PPARα  通路的

              https://www.china-fishery.cn                           中国水产学会主办    sponsored by China Society of Fisheries
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