Page 183 - 《水产学报》2025年第8期
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曹磊,等                                                                  水产学报, 2025, 49(8): 089416

              样并点样到       12% SDS-PAGE   凝胶 [ 生工生物工            500  μL  稀 释 后 的 溶 液 和   1  滴  NucBlue™  Live
              程  (上海) 股份有限公司          ],于  140 V  电压下电         ReadyProbes™试剂 (Thermo Fisher Scientific,美
              泳  50 min,然后将蛋白样品转移到                PVDF  膜      国),于    37°C  孵育  30 min,洗涤后用荧光共聚
              (Millipore,美国)。转膜后,使用含            5%  牛血清        焦显微镜观察染色结果。分别计算                  ROS  荧光强
              白蛋白和     0.05% TBS-Tween20 (TBST) (Epizyme,      度、脂滴荧光强度以及细胞核荧光强度,然后
              美国) 封闭     2 h,然后在室温下与           PPARγ 抗体        用  ROS  和脂滴的荧光强度分别除以细胞核荧光
              (A11183) 和  Actin  抗体 (AC038,ABclonal,中          强度,得到平均荧光强度值。

              国) 孵育    2 h。用   PBST  洗膜后再与      1∶2 000  稀
                                                               1.8    mtDNA  的提取与定量
              释 的 辣 根 过 氧 化 物 酶 标 记 的 抗 体  (AS014,
                                                                   使用洋地黄苷法从感染后的                J774A.1  细胞
              ABclonal,中国) 在室温下孵育            2 h。最后使用
                                                                                         [21]
                                                               中提取线粒体       DNA (mtDNA) 。将离心收集的
              PBST  洗膜后进行显色。

                                                               细胞用洋地黄苷缓冲液 (150 mmol/L             氯化钠、
              1.5    细菌定殖检测
                                                               50 mmol/L HEPES  和  25 μg/mL  洋地黄苷) 处理
                   J774A.1  细胞提前一天接种于         24  孔培养板,        10 min。随后    16 000 × g  离心  25 min  取上清液
                                 5
              每孔密度约为        6×10 个细胞。将杀鱼爱德华氏                   得到   mtDNA。同时,使用         SPARKeasy   组织/细
              菌以   10∶1  的感染复数 (MOI) 感染          J774A.1  细    胞  DNA  试剂盒 (山东思科捷生物技术有限公司)
              胞,随后在       35°C Opti-MEM  培养基 (Gibco,美          从细胞沉淀中提取核           DNA (nucDNA),并进行
              国) 中培养     5 h。将感染后的细胞用洗涤,加入                     核酸定量。
              500 μL  含  1% (体积比) TritonX-100  的磷酸盐缓               通过   qRT-PCR  扩增线粒体基因 (16S rDNA
                                                                                        [22]
              冲溶液     (PBS),振荡    10 min  以彻底裂解细胞。             和  ND4) 和核基因 (PMP22) ,引物见表            2。以
              所得裂解后上清用          PBS  按照  10 、10 、10 、10   4    PMP22  基因作为参考对照,使用              2 −ΔΔCt  方法计
                                           1
                                                2
                                                     3
                   5
              和  10 倍的稀释倍数进行梯度稀释,取                   0.5 μL    算 靶 基 因 的 相 对 表 达 水 平 。 通 过        mtDNA  /
              不同稀释倍数的稀释液滴于含有多黏菌素的固                             nucDNA  计算得到     mtDNA  拷贝数,使用对照组
              体  LB  平板上,置于       30°C  培养箱中过夜培养,              进行标准化。

              待菌落长出后进行计数。
                                                               1.9    酶联免疫吸附测定法 (ELISA)

              1.6    RNA  提取与实时荧光定量        PCR (qRT-PCR)
                                                                   使用小鼠前列腺素           E2 (PGE ) ELISA  试剂
                                                                                              2
                   使用   RNA  提取试剂盒 (R6812, Omega Bio-          盒 (上海江莱生物科技有限公司) 检测细胞培养
              Tek,美国) 从不同感染组的             J774A.1  细胞中提        上清液中     PGE 浓度。将感染后          J774A.1  细胞的
                                                                            2
              取 总   RNA。 按 照 试 剂 盒 说 明 , 使 用 基 因 组             培养物按照说明书进行稀释,加入含有                      PGE 2
              DNA  吸附柱于      14 000 × g  离心  3 min  去除样品       抗体的    96  孔板中进行孵育,依次添加             PGE 偶
                                                                                                       2
              中  DNA  污染。通过反转录试剂盒 [ 天根生化科                      联物、辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素和显
              技  (北京) 有限公司       ] 逆转录产生       cDNA  模版,       色底物    TMB。在酶标仪中读取           OD   0  值并绘制
                                                                                               45
              使 用    MonAmp™  SYBR  Green  qRT-PCR  Mix        标准曲线,计算样品中            PGE 的浓度。
                                                                                        2

              (Low ROX) (莫纳生物科技有限公司) 进行               qRT-
                                                               1.10    蛋白下拉实验     (Pull-down)
              PCR  上机。使用       β-actin  基因为参照,按       2 −ΔΔCt
                                                                   构建融合表达         HA  标签多肽的实验菌株
              方法计算靶基因的相对转录水平。

                                                               (EIB202∆P/eseJ-2HA ) 和 对 照 菌 株   (EIB202∆P/
                                                                                 +
              1.7    活细胞染色                                             +
                                                               glms-2HA )。细菌感染后,J774A.1         细胞用预冷
                   MitoSOX™线 粒 体 超 氧 化 物 指 示 剂                 的  PBS  洗涤,去除     PBS  并加入    1 mL  含有蛋白
              (Thermo  Fisher  Scientific, 美 国 )  和  BODIPY    酶抑制剂 (Roche,瑞士) 的裂解缓冲液 (Thermo
              581/591 C11  染料 (Thermo Fisher Scientific,美      Fisher Scientific,美国)。然后将细胞裂解液转
              国) 分别用     PBS  稀释至   500 nmol/L  和  2 μmol/L。   移至   EP  管中。待细胞完全裂解后用             BCA  蛋白
              针对不同感染组的            J774A.1  细胞,每孔加入             定量试剂盒 [ 生工生物工程            (上海) 股份有限公

              中国水产学会主办  sponsored by China Society of Fisheries                          https://www.china-fishery.cn
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