Page 71 - 《中国药科大学学报》2025年第5期
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第  56 卷第  5 期               栾亚萁,等:医用臭氧对脓毒症肾损伤的治疗作用及其机制                                     603

               国  Moor 公司);凝胶电泳仪、转膜槽、分子成像仪                      进行苏木精-伊红(hematoxylin-eosin,HE)染色,在
               ChemiDoc 系统(美国     Bio-Rad 公司);C5 酶标仪(美          400 倍显微镜下随机选取          5 个视野拍照,并用双盲
               国赛默飞世尔科技公司);LSM800免疫荧光双光子                        法量化近端肾小管损伤程度。
               共聚焦显微镜(德国         Carl Zeiss公司);纳米颗粒跟踪            2.4    下肢血流测量
               分析仪(德国      Particle Metrix公司)。                       小鼠麻醉后,以激光散斑多普勒血流仪扫描下
                1.3    动 物                                      肢血流。扫描头距离暴露的小鼠下肢                   20 cm  进行
                    C57BL/6J 小鼠(20~25 g,SPF   级)购自南京医           扫描,下肢血流灌注水平由监视器采集。
               科大学医药实验动物中心,许可证号:SCXK(苏)                          2.5    肾组织免疫荧光检测
                                               -/-
               2021-0001。C57BL/6J 背景的     Sr-a1 小鼠由南京医               固定的肾组织切片用二甲苯脱蜡,再水合,并
               科大学陈琪教授馈赠。所有动物实验均经南京医                            封闭。切片分别与抗           Cit-H3、TF、KIM-1、F4/80 的
                                                                              ®
               科大学动物爱护与使用委员会批准(编号:IACUC-                        一抗或    CoraLite 488 TUNEL  染料孵育。洗涤切片
               2305042),最大限度减少动物痛苦和使用数量。所                       并用荧光标记的二抗染色。细胞核用                  DAPI 复染。
               有操作均按照《实验动物管理和使用指南》规范                             2.6    Western blot 蛋白印迹检测
               进行。                                                   将肾组织切块在        RIPA  裂解缓冲液中匀浆并
                                                                用  BCA  分析试剂盒测量蛋白质浓度。用                   SDS-
                2    方 法
                                                                PAGE  凝胶分离等量的蛋白质(每孔             40 μg),随后转
                2.1    动物造模与取材                                  移到   PVDF  膜。室温下用       10% TBST  全脂牛奶封
                    小鼠在(22±2) ℃、12 h/12 h 明暗交替条件下               闭膜   2 h,分别加入抗       Cit-H3 抗体、组蛋白      H3 抗
               适应性饲养      2 d,自由摄食饮水,实验全程维持标准                   体、TF  抗体、TFPI 抗体、MMP9 抗体、NE          抗体、IL-

               SPF  环 境 。 药 效 试 验 将    C57BL/6J 小 鼠 随 机 分       1β  抗体、PAR-2 抗体、p53 抗体、Bax 抗体、KIM-1
               4 组,每组  6 只,分别为对照组、模型组(LPS)、治疗组(LPS +            抗体、TNF-α     抗体、p-AMPK     抗体、AMPK      抗体、
               臭氧)和单给臭氧组。LPS(12.5 mg/kg)用生理盐水                   Albumin 抗体或    β-actin 抗体,在  4 ℃  下孵育过夜。
               溶 解 后 予 小 鼠 腹 腔 注 射 造 模 。 治 疗 组 小 鼠 在            随后加入辣根过氧化物酶偶联的相应二抗,室温孵
               LPS  注射之前   2 小时腹腔注射臭氧(15 μg/mL,0.5 mL)。         育  1 h。用分子成像仪获取数据,并用               ImageJ 定量
               单给臭氧组小鼠的给药量和给药时间同治疗组。                            分析。
               机制实验将      C57BL/6J 小鼠和    Sr-a1 小鼠分别随机           2.7    NETs 相关指标的检测
                                               -/-
               分  3 组,每组    6 只,各分为对照组、模型组(LPS)、                     用  ELISA  检测试剂盒检测血浆样本中             Cit-H3
               治疗组(LPS +臭氧)。造模方法和臭氧剂量同上。                        和  MPO-DNA   的水平。
               LPS  注射  24 h 后对所有组别小鼠麻醉,分别于小鼠                    2.8    骨 髓 源 性 巨 噬 细 胞 ( bone  marrow-derived
               眶下区域取血,抗凝管收集,离心得到血浆。取血                           macrophage,BMDM)细胞培养
               后的小鼠实施安乐死,摘取部分肾脏组织投入                                  从健康   C57BL/6J 小鼠的股骨和胫骨中分离骨
               4%  多聚甲醛中进行固定,并将所有剩下的组织迅                         髓细胞,并在      DMEM   培养基中加入       10% L929 细胞
               速投入液氮中,转移至−80 ℃           超低温冰箱以备后续              提取物共培养       7 d,以分化为     BMDMs 。对诱导成
                                                                                                 [12]
               分析。TF-MPs 提取和鉴定实验将              C57BL/6J 小鼠      功 的  BMDM   按 照 以 下 分 组 处 理 : 正 常 对 照 组 ,
               随机分    4 组,每组    4 只,分别于    LPS(12.5 mg/kg)注     LPS  刺激组(100 ng/mL)、LPS+臭氧组、单给臭氧
               射后   0,6,12,24 h 麻醉取血,离心后收取         MPs 。        组。臭氧(15 μg/mL)在      LPS  刺激前   4 h 缓慢注入等
                                                       [11]
                2.2    肾功能检测                                    体积细胞培养上清液。
                    使用肌酐检测试剂盒(肌氨酸氧化酶法)和尿                         2.9    血浆  MPs 的检测分析
               素氮检测试剂盒(脲酶法)测定小鼠血液样品中的                                分离  LPS  模型小鼠血浆中的         MPs 。以纳米
                                                                                                   [11]
               CR  和  BUN  含量。                                  粒子跟踪分析(nanoparticle tracking analysis,NTA)
                2.3    肾组织病理检测                                  方法检测其粒径和浓度。将富含                MPs 的血浆离心
                    肾组织用多聚甲醛溶液固定后,做石蜡切片,                        沉淀物用     PBS  稀释至终体积      1 mL。通过纳米颗粒
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