Page 62 - 《中国药科大学学报》2025年第5期
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594                      学报   Journal of China Pharmaceutical University 2025, 56(5): 592 − 600  第 56 卷

               0003。细胞为     C57BL/6 小鼠提取的原代肺成纤维                  2.5    蛋白免疫印迹
               细胞。所有动物实验均符合动物伦理委员会标准,                                将第   3 代肺原代成纤维细胞以每毫升                 2.5×
                                                                  5
               并获得伦理审批(审批编号:A2023219-009)。                      10 个的密度接种到         6 孔板中,并在      37℃、5% CO   2
                                                                的细胞培养箱中过夜培养。当细胞汇合度达                     60%~
                2    方 法
                                                                70%  时,用药物处理细胞:对照组用等体积的                DMSO
                2.1    肺原代成纤维细胞提取与培养                            处理,模型组用博来霉素(0.5 μg/mL)处理,实验组
                    以颈椎脱臼法处死         C57BL/6 小鼠,取出小鼠的           博来霉素(0.5 μg/mL)和豆蔻明(10 μmol/L)共处理,
               全部肺组织(左肺          1 叶,右肺     4 叶)放入预冷的           回复实验组用博来霉素(0.5 μg/mL),豆蔻明(10
               DMEM   培养基中并置于冰上保存。用                DMEM   培     μmol/L)和  MHY1485(5 μmol/L)共同处理。各组细
                                                                                    2
               养基配制     1 mg/mL  的胶原酶Ⅳ型溶液共          2 mL。将      胞放入    37℃、5% CO 的培养箱中培养             24 h。24
                                                                h 后用   1×上样缓冲液收集样品,99℃,10 min 金属
               肺组织转移到胶原酶溶液中,用剪刀将肺组织尽量
                                                                浴热变性样品。用          10% SDS-PAGE  分离胶电泳分
               剪碎,然后放入        37℃  培养箱消化      30 min。消化结
                                                                离蛋白质(浓缩胶         80 V,30 min,分离胶     120 V,90
               束后,向其中加入         6 mL DMEM   培养基,1 700 r/min
                                                                min),通过湿转法(110 V,90 min)将蛋白转移到
               离心   5 min。弃上清液,再加入          DMEM 5 mL   培养
                                                                0.45  μmol/L  硝 化 纤 维 素 膜 上 。 转 膜 结 束 后 用
               基重悬,1 700 r/min 离心    5 min 收集细胞,重复该步
                                                                5%  的脱脂牛奶室温封闭            1 h,再分别孵育一抗:
               骤。用含有      10%  胎牛血清和      1%  青霉素-链霉素的
                                                                p21(1∶200)、p53(1∶1 000)、胶原蛋白(1∶1 000)、α-
               完全   DMEM   培养基重悬小鼠肺组织并接种到                 10
                                                                SMA(1∶1 000)、mTOR(1∶1 000)、p-mTOR(1∶1 000)
               cm  培养皿中,放置在        37℃、5% CO 的培养箱中培
                                              2
                                                                和  β-actin( 1∶1 000) , 4℃  过 夜 。 回 收 一 抗 , 并 用
               养。每    48 小时更换一次完全培养基,当细胞汇合
                                                                HRP  标记二抗(1∶5 000)孵育       2 h,最后用化学发光
               度达   80%  时进行常规传代培养。
                                                                成像仪(Bio-Rad)采集图像。Image J 软件进行灰度
                2.2    衰老相关  β-半乳糖苷酶检测
                                                                分析。
                    将 第  3 代 肺 原 代 成 纤 维 细 胞 以 每 毫 升      1×
                                                                 2.6    数据统计
               10 个的密度接种到提前放入爬片的                24 孔板中,并
                 5
                                                                     使用  GraphPad Prism  软件进行数据处理,结果
               在  37℃、5% CO 的细胞培养箱中过夜培养。当细
                              2
                                                                以均值±标准误(       x± s)表示。差异性分析采用单因
               胞汇合度达      40%~50%  时,用药物处理细胞:对照组
                                                                素方差分析并配合          Tukey 检验,其中     P<0.05 表示
               用等体积的      DMSO  处理,模型组用       H O (50 μmol/L)
                                               2  2             差异具有统计学意义。
               或博来霉素(0.5 μg/mL)处理,实验组用               H O (50
                                                      2
                                                        2
               μmol/L)或博来霉素(0.5 μg/mL)处理的同时共处理                   3    结 果
               梯度浓度的豆蔻明(1,5,10 μmol/L),回复实验组用
                                                                 3.1    豆蔻明缓解博来霉素诱导的肺成纤维细胞衰老
               博 来 霉 素 ( 0.5  μg/mL) , 豆 蔻 明 ( 10  μmol/L) 和
                                                                     博来霉素是一种         DNA  损伤剂,能通过诱导
               MHY1485(5 μmol/L)共同处理。各组细胞放入
                                                                DNA  双链断裂激活       ATM/ATR-p53 介导的     DNA  损
               37℃、5% CO 的培养箱中培养            24 h。按照试剂说
                           2
                                                                伤反应通路,诱导衰老          [7−8] 。为了研究豆蔻明是否能
               明书用衰老相关        β-半乳糖苷酶染色试剂盒检测,并
                                                                够缓解博来霉素诱导的细胞衰老,使用博来霉素
               用正倒置一体荧光显微镜观察拍照。                                 (0.5 μg/mL)处理原代肺成纤维细胞诱导细胞衰老
                2.3    DNA  损伤检测                                模型,同时加入梯度浓度的豆蔻明(1,5,10 μmol/L)
                    细胞处理步骤同“2.2”项。按照试剂说明书用                      处理细胞。SA-β-gal 活性的检测表明,与对照组相
               DNA  损伤检测试剂盒检测,并用全光谱激发共聚焦                        比,博来霉素处理组衰老细胞阳性率显著升高,而
               显微镜观察拍照。                                         在豆蔻明处理后显著抑制了博来霉素的诱导作用,
                2.4    ROS  检测                                  并呈现剂量依赖(图          1-A,图  1-B)。为了进一步验
                    细胞处理步骤“2.2”项。按照试剂说明书用                       证豆蔻明对细胞衰老的缓解作用,又通过免疫荧光
               ROS  试剂盒检测,孵育        DCFH-DA   探针的同时孵育           检测了    DNA  损伤标志物,同样也是衰老标志物的
               Hoechst,用正倒置一体荧光显微镜观察拍照。                         γ-H2AX。实验结果显示博来霉素处理组的                    DNA
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