Page 104 - 《中国药科大学学报》2025年第4期
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               (+/m)小鼠及其野生型同窝小鼠(+/+),于               10~12 周    物睡眠-觉醒记录与解析平台              Sirenia@Sleep Pro 软
               龄进行实验。在整个实验中,动物可以自由获取水                           件,通过快速傅里叶变换(FFT)方法,对小鼠脑电的
               和食物。由于雌性小鼠的睡眠模式每日的波动较                            功率频谱进行分析,以           10 s 分期或   4 s 分期对睡眠
               大,对药物的作用产生干扰,本研究选用雄性小鼠                           觉醒状态进行分段评价。不同时相的觉醒-睡眠脑
               作为实验对象。小鼠饲养于温湿度控制的                     SPF  屏    电图判定规则为:清醒期为不规则的快慢频率波形
               障房间内,光照周期为          12 h/12 h 黑暗光照交替。在           混合,并伴较高肌电活动;非快速动眼                    (non-rapid
               实验记录前       5 天,每天给予小鼠腹腔注射生理盐                    eye movement,NREM) 睡眠为高波幅、低频率(0.5~
               水,使小鼠逐步适应给药过程。具体实验在                       ZT1    4 Hz)慢波及较低的肌电活动;快速动眼                 (rapid eye
               (开灯后    1 个小时)给予小鼠腹腔注射,第一天给予                     movement,REM) 睡眠为规则的         θ 波(4~8 Hz)和低
               溶媒(vehicle)作为对照建立基线,并在第二天同一                      肌电活动。睡眠/觉醒时相的一个片段(bout)是指
               时间给予相应的药物作为实验组。在给药后持续                            维持在该时相超过          3 个分期,直至被其他时相打
               记录小鼠脑电图(EEG)和肌电图(EMG),从而可以                       断。微唤醒       (micro arousal) 是指在  NREM  睡眠期
               比较给药前后小鼠的睡眠模式。对于美托洛尔剂                            间短于    12 s 的觉醒。

               量依赖的实验,同一批次小鼠逐步接受从低剂量到                           2.4    超声心动图采集和分析
               高剂量(5、10、20、40、80 mg/kg)的测试,每个剂量                      将小鼠胸部的毛发用脱毛膏脱洗干净后进行
               给药间隔两天溶媒,尽量排除上一剂量药物的残留                           超声心动图检测,超声心动图检测使用高分辨率
               效应,每一个剂量药物作用均以该剂量前一天的溶                           Vevo 3100 系统。将小鼠麻醉后固定在加热的监护
               媒作为对照。                                           台上,戴上异氟烷面罩维持麻醉,四肢涂上除颤仪

               2.2    脑电肌电(EEG/EMG)和结合局部场电位                     导电膏,以监护生命体征。保持小鼠体温在                     37 ℃,
               (LFP)微电极埋置手术                                     以尽量减少心率变化。超声探头在胸部透过超声
                    EEG/EMG  微电极埋置手术同文献报道。将                     耦合凝胶剂进行勘探,当生命体征(尤其心率值)平
               10 周龄左右的小鼠用          2%  异氟烷诱导麻醉后固定              稳后,在    B  模式下获得胸骨旁长轴(PSLAX)图像,
               在脑立体注射仪上,异氟烷浓度维持在                     1.5%  左    并调整扫描探头至适当的位置,确定最大左心室长
               右。待呼吸平稳后,用镊子轻夹尾部测试痛感,无                           度。在此视图中,M          模式的测量线放在乳头肌后
               疼痛反应即可进行手术。给予小鼠眼睛处涂抹保                            缘,垂直于舒张末期和收缩末期左室最大长度的截
               护性眼膏,碘伏头皮表面消毒,在头皮中线处剪开                           面,从而获得      PSLAX  长轴模式图像,测量壁厚和腔
               头皮,暴露整个颅顶,用           3%  双氧水腐蚀黏膜后,再             室大小。然后,将扫描探头顺时针旋转                  90°,在乳头
               用  PBS  缓冲液清洗。将定位针移至中缝线靠前部                       肌水平获得左室胸骨旁短轴(SAX)视图的                   B  模式
               位,以前囟位置(Bregma)定位为原点,以及                 4 个颅     图像,并同先前的         PSLAX  一样获得      SAX  的  M  模
               钉位置:向前        1.0 mm,左右各     1.25 mm;向后    3.0   式图像。在      PSLAX   的  M  模式图像中对以下变量

               mm,左右各     2.5 mm。钻孔将焊接银丝的颅钉植入                   进行数据测量:左心室舒张末期内径(LVIDd)、左
               孔内,用牙科水泥固定。在封好的牙科水泥上放置                           心室收缩末期内径(LVIDs)、左心室舒张期前壁厚
               6 孔的   EEG/ EMG  微电极,连接颅钉导线,并焊锡                  度(LVAWd)、左心室收缩期前壁厚度(LVAWs)、
               加固电极连接,将肌电电极插入小鼠颈部肌肉,再                           左心室舒张期后壁厚度(LVPWd)、左心室收缩期
               次用牙科水泥固定,缝合手术区域,皮下注射                       0.5   后壁厚度(LVPWs)和心率值           (heart rate,HR)。左心
               mg/mL  卡洛芬    0.1 ml 镇痛后,将小鼠放回鼠笼。在               室舒张末期容积(LVEDV)、左心室收缩末期容积
               实验期间,将小鼠单独饲养在隔音箱中,箱体光线                           (LVESV)、射血分数(EF)和缩短分数(FS)由               Vevo
               强度严格控制在        80~100 lux,小鼠适应记录电缆         7 d   3100 系统自动计算。

               后开始正式实验。                                         2.5    数据处理

               2.3    睡眠记录和分析                                        所有实验数据均采用           GraphPad Prism 9 软件
                    在获取原始的脑电图数据后,采用半自动化动                        进行统计分析。数据采用双因素方差分析(Two-
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