Page 213 - 《水产学报》2025年第8期

郑家浪，等 水产学报, 2025, 49(8): 089618

躯干 (背高点、腹低点、背鳍末端和臀鳍起点 crustes 变换，执行标志点的平移、旋转和缩放，
等) 及尾部 (尾柄末端) 等关键解剖位点，确保 确保各标志点的相对位置一致，以消除非形态
形态特征全面覆盖。所有图像的尺寸均按预定 因素对数据的影响。对 Procrustes 形状数据进行
比例进行标准化，随后将数字化后的数据导入 典型变量分析 (Canonical Variate Analysis, CVA)，
MorphoJ 软 件 进 行 几 何 形 态 分 析 。 通 过 Pro- 提取典型变量 CV1 和 CV2 (n=223)。

37%
25% 肥满度 condition factor (n=308)
35%
形态 几何形态 geometric morphology (n=223)
形态学标志点
morphology 28% 体高/体长 body length/body height (n=287)
morphological landmark
36%
25% 叶黄素 lutein (n=63)
32%
体色 黄蓝值 yellow-blue b* (n=113) 皮肤取样部位
色差测定位点 sampling location
color 32% 红绿值 red-green a* (n=113)
大黄鱼 color difference monitoring point
L.crocea 25% 48% 肌纤维面积/肌内膜面积 (n=64) 低品质 poor quality
muscle fiber/intramuscular membrane area
质地 肌纤维(红色区域)
52% muscle fiber (red)
texture 总游离氨基酸 total free amino acids (n=57)
22% 肌内膜(白色区域)
水分 moisture (n=57)
25% 23% intramuscular membrane (white)
粗脂肪 crude lipid (n=57)
营养 24%
∑n-6多不饱和脂肪酸 ∑n-6 PUFAs (n=57) 肌纤维(红色区域)
nutrition muscle fiber (red)
31% ∑n-3/∑n-6 (n=57)
高品质 high quality
图 1 基于形态、体色、质地和营养四个主要指标的大黄鱼品质评价框架
百分比表示每项占综合评分的贡献率，“n”表示检测数量；下同。
Fig. 1 Evaluation framework of L. crocea quality based on four primary indicators of
morphology, color, texture and nutrition
Percentages represent the contribution of each indicator to the overall score, "n" indicates the number of fish samples tested; the same below.

1.3 体色测定 计算叶黄素含量 (n=63)，公式：
叶 黄 素 含 量 (μg/g)=(A+0.019 7)/0.080 8×
大黄鱼侧面腹部皮肤的体色评价采用国际
V/m×1 000
照明委员会 (CIE) 1976 年制定的 L 、a 和 * b 色
*
*
式中，A 为吸光度值，V 为丙酮洗脱体积 (mL)，
度标准，并使用色差仪 (CR-8，广东三恩时科
m 为皮肤重量 (g)。
*
*
技有限公司) 进行测量。L 、a 和 * b 分别表示亮
度、红绿值和黄蓝值。测量在白天和黑夜分别 1.4 肌肉质地分析
进行，侧面腹部的测量位置位于大黄鱼侧面腹 组织样本经固定、石蜡包埋、切片、苏木
鳍与胸鳍之间部位 (图 1)。测量前将大黄鱼体表 精-伊红染色、脱水和封片后，使用显微镜采集
*
水分擦干，将大黄鱼侧面放平，并测量 a 值和 图像，并利用 Image Plus 6.0 软件测定肌纤维面
b 值 * (n=113)。 积/肌内膜面积比值 (MFA/IMA, n=64)。肌肉游
大黄鱼侧面腹部皮肤的叶黄素测定参照郭 离 氨 基 酸 (TFAA) 的 测 定 参 照 GB/T30987 —
全友等 [15] 的方法并稍作修改。称取大黄鱼皮肤 2020《植物中游离氨基酸的测定》标准 ，并
[16]
样品，剪碎后置于 EP 管中，用研磨珠和液氮 稍作修改。新鲜肌肉组织与 0.02 mol/L 盐酸混
粉碎，加入丙酮制成匀浆。样品在 4 °C 避光静置 合均匀制成匀浆，经 20 min 超声处理后，以
16 h 后，于 4 °C 和 8 000 r/min 条件下离心 5 min。 6 000 r/min 离心 5 min 收集上清液，并通过 C 18
取 300 μL 上清液，在酶标仪上 446 nm 处测量 纯化柱进行纯化。洗脱液转入离心管后置于 60 °C
吸光度 (A) 值，并根据叶黄素-吸光度标准曲线 的真空干燥箱中干燥 2 h，以完全去除溶剂。样

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