Page 100 - 《中国药科大学学报》2026年第2期
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               时还原糖含量来量化酶解效率;并采用凝胶色谱法                           照,使用酶标仪在激发波长在              492 nm,发射波长在
               测定   DOP  的相对分子质量,乌氏黏度计法结合                       518 nm  条件下,测定各浓度溶液荧光强度。以
               Mark-Houwink 方程测定      MDOP、LDOP    的相对分         FITC  质量浓度(μg/mL)为横坐标,荧光强度(扣除
               子质量。                                             PBS  空白值)为纵坐标,绘制标准曲线。
                2.2    脂质体的制备                                        取  F-DOP、F-MDOP、F-LDOP,用      PBS  溶解后
                    按比例称取大豆卵磷脂、胆固醇、十八胺体系                        在量瓶中定容,充分混匀,在上述相同检测条件下
               溶于乙醚,与      3 种相对分子质量多糖的           PBS  溶液混      (激发波长     492 nm,发射波长      518 nm)测定荧光强
               合后冰浴超声处理。经           60 ℃  减压旋蒸去除有机溶             度,并根据标准曲线计算荧光标记取代度。
               剂,加入    PBS  后超声分散,最终通过           0.22 μm  滤膜     2.4.3 在离体皮肤中的毛囊靶向作用研究 取巴
               3 次过滤制得脂质体(DOP-lip、MDOP-lip、LDOP-                马香猪猪皮进行体外透皮实验(in vitro penetration
                   [18]
               lip) 。采用单因素实验设计,以粒径以及                  PDI 为     test,IVPT),将其剪成适当大小;用小棒将指甲油
               评价指标,系统考察多糖、卵磷脂、胆固醇的比例以                          堵塞于巴马香猪的皮肤毛囊处,对照组用等量的指
               及超声时间对脂质体形成的影响。                                  甲油堵塞空白位置(非毛囊处),以确保两组有效透
                2.3    脂质体的表征                                   皮面积保持一致,待自然风干后即得实验组“毛囊
                    分别配制鱼精蛋白(10 mg/mL)与             10%  曲拉     堵塞组”与对照组“毛囊开放组”。将皮肤固定于
               通-100 溶液 ,各取      100 μL  与待测脂质体等体积混             Franz 扩散池中,放入搅拌子,注满生理盐水,给药
                          [19]
               合。纯水     5 mL  稀释后离心(6 000 r/min,30 min),取       池注入荧光强度相同的              FITC-lip、F-DOP-lip、F-
               上清液经苯酚-硫酸显色法处理,于                488 nm  测定吸      MDOP-lip、F-LDOP-lip 溶液,保持磁力搅拌(400
               收度。通过公式计算包封率(EE)与载药量(DL)。                        r/min)和恒温水浴(32 ℃),分别于           1、2、4、8 h 时
               采用粒径仪对脂质体的粒径、PDI 和               Zeta 电位进行       间点取样,用生理盐水擦洗皮肤表面残留的荧光
               测量,并用透射电子显微镜(TEM)观察样品的形态                         溶液,并用滤纸吸干水分。每组实验设置                   3 个平行
               与样貌。                                             样本。取皮肤中央          0.2 cm×0.2 cm  区域进行冷冻包
                2.4    DOP-lip、MDOP-lip、LDOP-lip 的毛囊靶向          埋及切片处理,采用倒置荧光显微镜观察荧光渗透
               性研究                                              情况
                2.4.1 荧光标记 精密称取不同相对分子质量的                         2.5    细胞的增殖、保护作用以及摄取机制研究
               多糖粉末,将其溶解于二甲基亚砜(DMSO)中。随                          2.5.1 MTT  法检测   3 种相对分子质量脂质体对人
               后,按顺序加入吡啶、异硫氰酸荧光素(FITC)以及                        源真皮毛乳头细胞          (HDPs) 的促增殖作用 HDPs
               催化剂二月桂酸二丁基锡,置于               95 ℃  油浴环境中         培养在     90%  含双抗的     DMEM   高糖培养基,10%
               搅拌反应     2 h。反应结束后,加入        2 倍体积的乙醇使           Gibco 胎牛血清的完全培养基中,培养设置条件为
               多糖沉淀,抽滤后得到黄绿色沉淀。接着用                     1 倍体     37 ℃、5% CO 。取对数生长期的            HDPs 细胞接种
                                                                             2
               积的乙醇对沉淀进行抽滤洗涤,之后将沉淀溶于纯                           于  96 孔板上,分别与       DOP-lip、MDOP-lip、LDOP-
               水中。将所得溶液装入透析袋进行透析纯化,经冷                           lip 溶液共孵育     24 h,之后加入质量浓度为          1 mg/mL
               冻干燥处理后,即可获得异硫氰酸荧光素(FITC)标                        的  MTT  溶液,在避光条件下继续培养             4 h。孵育结
               记的石斛多糖(F-DOP、F-MDOP、F-LDOP)。采用                   束后,每孔加入二甲基亚砜(DMSO)100 μL,置于摇
               荧光标记的      F-DOP、F-MDOP、F-LDOP      同“2.2”项      床中振摇     10 min。最后使用酶标仪在          490 nm 波长
               下方法制备脂质体,得到             F-DOP-lip、F-MDOP-lip、    下测定吸收度,并依据此计算细胞存活率。
               F-LDOP-lip。                                       2.5.2 对损伤细胞的保护作用 采用二氢睾酮
                2.4.2 FITC  标准曲线绘制及荧光强度测定 精密                    (DHT)构建 HDPs 细胞损伤模型,具体操作如下:
               称量   FITC,用  PBS  溶液在量瓶中溶解并定容,配制                 首先,配制不同浓度的            DHT  溶液并加入细胞悬
               成  2 μg/mL  的  FITC  溶液作为母液。将母液进行梯               液,通过观察细胞的存活状况来筛选出最佳的                     DHT
               度稀释,得到浓度依次为              2、1、0.5、0.25、0.125、     实验浓度。随后,取处于对数生长期的                   HDPs 细胞
               0.062 5 μg/mL  的标准溶液,以      PBS  溶液为空白对          接种于    96 孔板,分别设置        3 组进行培养:空白组
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