Page 101 - 《中国药科大学学报》2026年第2期
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第  57 卷第  2 期  夏 丽,等:靶向毛囊的      3 种相对分子质量铁皮石斛多糖脂质体治疗雄激素性脱发的效应研究                            227

               (仅加入    DMEM   高糖培养基)、模型组(加入溶解有                  行给药,具体为:空白组(上下午涂抹生理盐水)、阳
               50 μmol/L DHT  的  DMEM  高糖培养基)、实验组(加             性对照组(上午       0.25%  睾酮溶液+下午      2%  米诺地尔
               入溶解有     50 μmol/L DHT  以及  DOP-lip、MDOP-lip、    溶液)、空白脂质体组(上午             0.25%  睾酮溶液+下午
               LDOP-lip 的  DMEM   高糖培养基)。将这         3 组细胞       空白脂质体溶液)、DOP-lip 组(上午            0.25%  睾酮溶
               培养   48 h 后,计算各组的细胞存活率。                          液+下午    DOP-lip 溶液)、MDOP-lip 组(上午       0.25%
                2.5.3 细胞摄取定性和定量分析 为考察将多糖                        睾酮溶液+下午        MDOP-lip 溶液)、LDOP-lip 组(上
               制备成脂质体是否改善细胞摄取效果,以                     1.5×10 5  午  0.25%  睾酮溶液+下午      LDOP-lip 溶液)。每日给
               D  相对分子质量的       DOP-lip 为代表进行研究。取对              药时观察并拍照记录小鼠背部毛发生长情况以及
               数生长期的      HDPs 细胞接种于      12 孔板,加入相同荧           背部由粉色变黑至长出毛发的时间。
               光强度的      FITC、F-DOP、FITC-lip、F-DOP-lip、孵         2.6.2 HE  染色及皮肤组织学观察 连续给药
               育  4 h,用倒置显微镜定性和流式细胞仪定量观察                        28 d 后,对小鼠进行麻醉并脱毛处理。随后剪取其
               HDPs 细胞的荧光摄取情况。                                  背部皮肤组织,立即放入             4%  多聚甲醛固定液中,
                2.5.4 入胞机制的研究 取对数生长期的                  HDPs     在  25 ℃  条件下固定     24 h。固定完成后,用 PBS        冲
               细胞接种于      12 孔板,分别加入        1 mL  阿米洛利(50       洗组织,接着进行乙醇脱水,之后进行石蜡包埋。

               µmol/L  巨胞饮通路抑制剂)、甲基-β-环糊精(8                     使用切片机将组织制备成厚度为                  3 μm  的皮肤切
               mmol/L;小窝蛋白介导内吞通路抑制剂)                [20]  及氯丙   片,经二甲苯脱蜡、乙醇复水操作后,开展                     HE  染
               嗪(10 µg/mL;网格蛋白介导内吞通路抑制剂)                  [21]  色:先用苏木精染色          5 min,再用  1%  盐酸乙醇溶液
               预处理    4 h 阻断内吞通路。随后与           F-DOP-lip 共孵     分化   2 s,随后用伊红染色        1 min。染色结束后,对
               育  4 h,经胰酶消化中止反应后,1 500 r/min 离心收                切片进行脱水透明处理,然后封片。最后,使用倒
               集细胞沉淀。PBS        重悬后通过流式细胞术定量分                   置显微镜观察并记录小鼠皮肤切片的结构、厚度变
               析荧光强度,表征不同内吞抑制条件下纳米颗粒的                           化以及毛囊的生长情况。
               细胞摄取效率,探索          DOP-lip 的入胞机制。
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                2.6    DOP-lip、MDOP-lip、LDOP-lip 对雄激素性
               脱发小鼠的生发作用                                         3.1    脂质体的制备与表征
                2.6.1 雄激素性脱发模型小鼠的建立与给药                               本研究通过还原糖生成量(图              1-A)间接反映
               C57BL/6J 小鼠经腹腔注射乌拉坦麻醉后,剃除背部                      酶解效率。结果显示,随着酶解时间增加,还原糖
               毛发(2 cm×4 cm),脱毛膏脱净,以脱毛日为实验第                     含量递增,初步证明了酶解时间对降解效率的调控
               0 天。此后按照上午涂抹            0.25%  睾酮溶液(溶剂为          作用。测定得        DOP、MDOP    以及   LDOP  的相对分
                                                                                                      3
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               乙醇-丙二醇,4∶1),下午涂抹相应给药溶液方式进                        子质量分别为       1.5×10 、4.05×10  和 4  7.50×10  D。

                A                      B                       C                      D

                  0.5                    100 nm                 100 nm                 100 nm
                  0.4
                 Absorbance  0.3
                  0.2
                  0.1
                   0
                      0 1 2 3 4 5 6 7
                       Enzymolysis time/h
               Figure 1    Amount of reducing sugar generated indirectly reflects the enzymatic hydrolysis efficiency graph and TEM images of high,
               medium and low molecular weight polysaccharide liposomes ( x ± s, n=3)
               A: Enzymatic hydrolysis efficiency; B: DOP-lip; C: MDOP-lip; D: LDOP-lip

                    通过对各处方因素的研究,得出其制备的最佳                             TEM  结 果 如 图   1-B−1-D  所 示 , 制 备 而 成 的
               处方和工艺。在此条件下制备的                DOP-lip、MDOP-      DOP  脂质体为类球形,粒径与马尔文粒径测定仪结
               lip、LDOP-lip 平均粒径、PDI、Zeta 电位、包封率                果相近,负载多糖后的脂质体指纹特征消失,提示
               (EE)、载药量(DL)如表        1 所示。                      DOP  可能修饰在脂质体外围。
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