Page 69 - 《渔业研究》2025年第5期
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610                                  渔  业  研  究                                     第 47 卷

              已成为当前中国草鱼大规模发病和死亡的主要流行                           蛋白预制胶(ACE,韩国) ;Hind Ⅲ、EcoR Ⅰ和
              株 [6] ,对  1  龄及以下的草鱼群体的致死率超过                     BamH Ⅰ限制性内切酶(NEB,美国) ;抗荧光淬
                  [7]
              80% 。该亚型毒株同时具有水平传播(水体/寄生虫                        灭封片剂(碧云天,中国) 。
              媒介)与垂直传播(亲本)双重途径,并能建立潜伏                              细胞培养箱、酶标仪(Thermo Fisher Scien-
              感染,当水温在         28 ℃  及以上时容易引起急性暴                tific,美国) ;电转仪、电转槽(TANON,中国) ;
                            [8]
              发,死亡率较高 。基于此,建立精准的                  GCRV  早      凝胶成像系统(Bio-Rad,美国) ;Amersham Image-
              期诊断体系已成为草鱼出血病综合防控的迫切需求。                          Quant 800  蛋白印迹成像系统(Cytiva,英国) 。
                  在疫病诊断技术领域,单克隆抗体凭借其高度                          1.3 VP4  真核表达及纯化
              特异性的优势,在水产动物及哺乳类动物各类疾病                               本研究基于      GenBank  中  GCRV YX246  株 S6
                                        [9]
              诊断中具有重要的应用价值 。然而,当前针对                            基因序列(基因登录号:PQ553631.1) ,通过基因
                                                                                       275
              GCRV-Ⅱ单克隆抗体的研究尚处于起步阶段,现有                         合成获得编码        VP4  蛋白  A ~S 650  片段的基因序
              报道多聚焦于病毒结构蛋白              VP4、VP35  以及   VP7     列。设计特异性引物(表             1) ,以该基因为模板,
              的抗原特性分析        [10-11] 。值得注意的是,GCRV-Ⅱ            采 用  50  µL  聚 合 酶 链 式 反 应 ( Polymerase  chain
              S6  基因编码的     VP4  蛋白作为主要衣壳蛋白,具有                 reaction ,PCR)反应体系      [  含  1 μL  上下游引物、
              强免疫原性特征,其在不同分离株间的高度保守性                           1 μL 互补脱氧核糖核酸(Complementary deoxyribo-
              为建立   GCRV-Ⅱ免疫检测方法提供了理论基础              [12-13] 。  nucleic acid,cDNA)模板、5 μL 10×Pfu Buffer]  进
              相较于传统杂交瘤制备技术,新兴的单个                    B  细胞      行扩增。反应条件:95 ℃ 5 min,95 ℃ 5 s,55 ℃
              抗体制备技术有着高效便捷、丰富稳定的优点,在                           2 min,72 ℃ 1 min  循环  25  次,72 ℃ 10 min。扩
              水产病原检测领域展现出显著的应用潜力,但目前                           增产物经     Hind Ⅲ和  BamH Ⅰ双酶切位点克隆至
              该技术在水生病毒领域的应用研究不足。因此,本                           pTT5-hFc 载体,转化至      TOP10  感受态细胞,经菌
              研究以病毒      VP4  蛋白为免疫原,结合单个           B  细胞      落  PCR 筛选阳性克隆并进行测序验证,获得正确
              抗体制备技术和        HEK293  真核表达系统制备重组单               构建的重组表达质粒。随后,将阳性质粒转染至
              克隆抗体,旨在为         GCRV-Ⅱ病毒快速诊断试剂盒                 HEK293F  细胞,经    37 ℃、130 r/min  培养  6 d,收
              的开发和     VP4  蛋白功能解析等相关研究提供关键                    集培养上清液,经         12 000 ×g  离心和  0.22 µm  滤膜
              的工具与技术支撑。                                        过滤。采用      Protein A  亲和层析纯化:首先用磷酸
                                                               缓冲盐溶液(Phosphate buffered saline,PBS,pH=
               1 材料与方法
                                                               7.4) 平 衡 层 析 柱 , 上 样 后 以    PBS  洗 涤 至 基 线
               1.1 试验动物、病毒、细胞和质粒                               平衡,再用      0.1 mol/L  甘氨酸(pH=3.0)洗脱,并

                  4  月龄雌性新西兰大耳白兔(以下简称白兔)                       立即用    1 mol/L 三羟甲基氨基甲烷盐酸盐 [Tris
              由武汉万千佳兴生物科技有限公司提供,平均体质                           (hydroxymethyl) aminomethane hydrochloride,Tris-
              量为(2.1±0.2)kg;GCRV-YX246        毒株由本实验           Cl,pH=8.5]  中和。收集洗脱组分,获得纯化重组
              室分离保存;HEK-293F       细胞、TOP10     感受态细胞。         VP4  蛋白,通过十二烷基硫酸钠−聚丙烯酰胺凝胶
              抗体重组表达载体          pcDNA3.1-HCH  和  pcDNA3.1-     电泳(Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel ele-
              LCH  为本实验室改造保存(Thermo Fisher Scientific,         ctrophoresis,SDS-PAGE)和考马斯亮蓝染色分析
              美国) ;真核表达载体          pTT5-hFc 为本实验室改造            显示其纯度。
              保存。中国科学院水生生物研究所伦理审查委员会                            1.4 免疫动物
              批准动物实验,批准编号为 IHB-LL-2024044。                         采用纯化的重组        VP4  蛋白对   4  月龄健康雌性
               1.2 主要试剂和实验仪器                                   白兔进行皮下免疫,在初次免疫时,将                   200 µg  重
                  弗氏完全佐剂、弗氏不完全佐剂(Sigma,美                       组  VP4  蛋白与等体积弗氏完全佐剂充分乳化后,
              国) ;Protein A Beads(常州天地人和生物科技,                  采用皮下多点注射方式接种;随后每隔                   14 d  进行
              中国) ;HRP    标记山羊抗兔二抗(Jackson,美国) ;               加强免疫,共       4  次,每次使用     200 µg  重组  VP4  蛋
              Cy3  标 记 羊 抗 兔  IgG( H+L) ( Abcom, 中 国 ) ;       白与等体积弗氏不完全佐剂乳化后,以相同剂量
              Ni Sepharose(GE,美国) ;Ni-NTA Agarose(Invi-        和接种方式进行注射。整个免疫过程中,严格保持
              trogen,美国) ;FreeStyle 293 Expression Medium、     每次免疫时间间隔和剂量的一致性。在第                  5  次免疫

              RPMI-1640  培养基(Thermo,美国) ;FuturePAGE            后的第   7  天采集白兔全血样本,静置离心后分离血
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