Page 147 - 《水产学报》2026年第01期
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1 期          周佳峥,等:三疣梭子蟹养殖底质恶化的表型和理化特征及其与细菌群落的相关性                                        50 卷

              量 PCR 仪   (Roche,瑞士)。                            种水平操作分类单元          (zOTUs)。使用   QIIME2  将序
                                                               列 与  Silva 数 据 库  (v123)(https://www.arb-silva.de/)
               1.2    实验方法
                                                               的系统发育信息进行比对,以获得分类注释信息。
                    实验设置和样品采集  选取               42  只暂养后
                                                               为消除样本间测序深度不一致造成的偏差,所有
              的梭子蟹,称重,重新分布到               6  个帆布池中,每           样本数据作最小深度的归一化处理,用于后续分
              个帆布池     7  只,进行为期      28 d  的养殖实验,养殖           析。本研究的原始         16S rRNA  基因测序数据已上
              管理同暂养,整个养殖期间不换水。采用彼得森                            传至美国国家生物技术信息中心               (NCBI) 序列读取
              抓斗式采泥器分别于第            0、7、14、21    和  28 天从      档案  (SRA) 数据库,登录号为         PRJNA1252452。
              各帆布池的四角和中央采集梭子蟹活动区沙样,                                 氮循环和硫循环相关功能基因表达的定量
              采样深度     3 cm,单次采样面积约          0.2 m ,混合均        PCR  分析  以底质细菌基因组              DNA  为模版,
                                                 2
              匀后分成     6  份,每份约    80 g,分别放入无菌袋中。              以  16S rRNA  基因为内参,采用        N  循环和   S  循环
              得到实验的重复数         n = 6,共获得    30  个底质样品,         相关基因的特征性引物          [22-37] (表  1) 进行  qPCR  分析。
              用冰盒保存后运至实验室。把沙样先置于超声波                            本研究扩增的       N  循环相关基因包括固氮酶还原酶
              清洗机内超声       15 min,经  100 μm  无菌尼龙网过滤           亚基基因    (nifH)、氨单加氧酶亚基        B  基因  (amoB)、
              去掉杂质后,分成          2  份。一份经     0.45 μm  孔径的      亚硝酸氧化还原酶         α  亚基基因    (nxrA)、硝酸还原
              聚碳酸酯膜过滤后冷藏于             4℃,用于底质理化指               酶基因   (narG)、亚硝酸还原酶基因        (nirK1-3  和  nirS1-
              标分析;另一份经          0.22 μm  孔径的聚碳酸酯膜过             3)、氧化亚氮还原酶基因           (nosZ1-2)、硝酸还原酶
                                                               基因  (napA) 和谷氨酸脱氢酶基因          (gdhA);S  循环
              滤后冻藏于–80℃,用于细菌             DNA  提取。本研究
                                                               相关基因包括异化型亚硫酸还原酶                 A/B  亚基基因
              获得了宁波大学实验动物伦理委员会                  (IACUC) 批
                                                               (dsrA  和  dsrB) 和腺苷酸硫酸盐还原酶        A/B  亚基基
              准,实验过程中操作人员严格遵守宁波大学实验
                                                               因  (aprA  和  aprB)。PCR  体系共  20 μL,包含  cDNA
              动物伦理规范,并按照宁波大学实验动物伦理委
                                                               模板  2 μL,SYBR Premix Ex TaqⅡ(2×)10 μL,每
              员会制定的规章制度执行。
                                                               个 引 物  0.2  μmol/L, ROX  Reference  Dye  or  Dye
                    理化指标测定  在现场采集沙样时使用美
                                                               II(50×) 0.4 μL  和  ddH O 6 μL。qPCR  反应程序设置
                                                                                 2
              国  Spectrum IQ150  土壤原位   pH  计直接测定底质            如下:95℃     预变性   30 s 激活  DNA  聚合酶并变性
              的温度和     pH。使用    YSI 便携式多参数水质分析仪                双链  DNA,95℃    变性   5 s,60℃  退火   30 s,共  40
              紧贴池底,测定沉积物-水界面的溶解氧                    (DO) 含     个循环。每个样品设置          3  次  PCR  重复。以  pMD19-
                                                      +
              量。使用 HACH 试剂测定沙样滤液的                  NH -N、      T  为载体,从沙样中扩增的          393 bp  细菌靶向片段,
                                                      4
                  −
              NO -N、NO -N −   和  H S  含量。分子氨     (NH ) 浓度      构建标准质粒,经            倍稀释串联得到
                 2        3       2                 3                           10                16S rRNA
              根据   Bower 等  [20]  的公式计算得到。                     基因标准曲线,计算标准曲线方程与                R 值。其中,
                                                                                                 2
                    DNA  提取、PCR    扩增、Illumina 测序和序            根据标准曲线生成的          16S rRNA  基因拷贝数定义
              列处理  用无菌剪刀剪碎滤膜,根据试剂盒说                            为绝对原核微生物生物量。N              循环和    S  循环功能
              明书提取底质膜样的总            DNA。经    DNA  纯化试剂         基因丰度的计算方法参照公式:
              盒纯化后,采用 NanoDrop 2000        测定 DNA 浓度及                     (31−C T )(10/3)
                                                                   GR = 10
              纯度,检测合格的          DNA  用于  PCR  扩增。采用细
                                                               式中,GR     为相对基因丰度,C 为        T   qPCR  结果,
              菌 通 用 引 物 对     (338F: 5'-ACTCCTAC  GGGAG-
                                                               31  为检出限。
              GCAGCAG-3'和     806R: 5'-GGACTACHVGGGT-
                                                                   GA Fun  =(GA 16S  × GR Fun )/ GR 16S ,
              WTCTAAT-3')PCR   扩增   16S rRNA 基因的    V3~V4
                                                               式中,GA    表示基因绝对丰度,16S          和  Fun  分别表
              区 。用     1%  琼脂糖凝胶电泳和        NanoDrop  分光光       示  16S rRNA  基因和功能基因     [38-39] 。
                [21]
              度法分析     PCR  产物质量。将       PCR  扩增产物进行                数据分析  采用         ggplot2  包和  ggalt 包对梭
              等摩尔合并,在         MiSeq  平台上进行测序。按照                子蟹的存活曲线进行可视化。采用                 vegan  包计算
              USEARCH   流 程  (https://www.drive5.com/usearch/)  每个样本的     Shannon  指数,并用      BH (Benjamini-
              处理扩增子测序数据。简言之,将原始数据与细                            Hochberg) P  值校正和   Kruskal-Wallis 检验来比较
              菌标签合并,并聚类到具有              100%  序列相似性的           各 组 间  Shannon  指 数 的 统 计 差 异 。 基 于    Bray-

              中国水产学会主办  sponsored by China Society of Fisheries                          https://www.china-fishery.cn
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