Page 9 - 《中国药科大学学报》2025年第5期
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第  56 卷第  5 期                涂远博,等:肝脏器官芯片在成药性评价中的应用进展                                      541


                                                                                                  细胞1
                                                                                                   多孔膜

                                                                                                  细胞2
                                                      细胞
                          单通道(用于单种细胞培养的流道设计)                   双通道-夹层设计(多用于模拟上皮-内皮的屏障作用)

                                               多孔膜                                      多孔膜





                                          细胞1     细胞2                              细胞1   细胞3    细胞2

                   双通道-平行设计(多用于模拟细胞1和细胞2之间的旁分泌作用)                     三流道(用于模拟多细胞复杂结构)
               图 2    基于微流道的器官芯片类型     (改编自文献  [9],遵循  CC BY 4.0  授权协议)

               表 1    不同流道芯片中压力和流速    [10]
                                                                                       压力/Pa
                  通道数量         腔室形状                  内腔体积
                                                                          2 μL/min     6 μL/min    10 μL/min
                   单通道           圆形         高 0.2 mm,宽 0.3 mm,半径1 mm       0.005        0.015        0.025
                   单通道           甬道         高 0.2 mm,宽 0.25 mm,长 12 mm      0.02        0.06         0.1
                   三通道           甬道         高 0.2 mm,宽0.25 mm,长 15 mm       0.02        0.06         0.1


                                                                          [14]
               计优化的重要考量。此外,OOC              的材料应具有适合            的  3D  结构 。相较于二维细胞培养,类器官更能
               的光学透明度、透气性、良好的细胞相容性,同时满                          模拟人体组织的微环境,在结构和功能上更加接近
               足芯片制备工艺的相关需求。                                    真实组织。Li 等      [15]  利用  3D  打印技术构建人肝脏
                1.2    肝细胞来源                                    类器官,能长期培养         16 d,白蛋白、尿素等指标均显
                    肝脏器官芯片作为一种模拟人体肝脏微环境                         著高于二维培养,同时结合             DNA加合物组学技术,
               的动态细胞培养系统,其核心在于生理相关的肝细                           开发了快速发现潜在遗传毒性成分的新策略。由
               胞。肝实质细胞约占肝脏总细胞数量的                   60%,主要       于类器官微米级的培养体积与微流控体系高度契
               负责肝脏代谢;而肝非实质细胞主要调节肝脏微环                           合,引入类器官的器官芯片(又称类器官芯片)能够
               境  [11] ,对体外肝脏模型的生理相关性至关重要。                      更好地模拟细胞-细胞、细胞-基质间的信息物质交
               Scheidecker 等  [12]  构建了一种流体阵列式       LOC,发      流和空间分布,而动态培养条件可以更好地促进类
               现肝窦内皮细胞和肝星状细胞等非实质细胞可以                            器官的成熟 。Calamaio 等         [17]  利用源自  hiPSC  的
                                                                           [16]
               促进肝脏功能,尤其是在动态培养的条件下。原代                           间充质干细胞、肝细胞以及内皮细胞,开发了微型
               人肝细胞(primary human hepatocyte, PHH)是理想           化肝类器官,相比静态培养,动态培养下表现出更
               的细胞来源,但其来源稀缺且难以长期稳定维持表                           高的白蛋白表达水平。
               型  [13] 。 因 此 , HepG2、 HepaRG、 L-02 等 肝 细 胞       1.3    检测系统
               系的使用更为广泛。近年来,干细胞技术,尤其是                                由于微米级的尺寸大小,微量分析对于                   LOC
               人诱导多能干细胞(human induced pluripotent stem          的开发与质量控制尤为重要。液相色谱-质谱联用
               cell,hiPSC),因为生理相关性高、来源广泛和多向                     技术凭借其超高灵敏度,广泛用于                 LOC  各种标志
               分化潜能等优点,受到越来越多的关注,也是构建                           物的检测 。但这种离线的分析检测方法仍属于传
                                                                        [18]
               类器官的理想细胞来源。                                      统的侵入性终点检测,难以满足实时、原位检测的
                    类器官是利用源自健康或患病组织(例如肿                         评价需要 。电化学与光学等生物传感器由于自身
                                                                        [19]
               瘤)的多能或组织驻留干细胞、祖细胞或分化细胞                           微型化、高灵敏的优点,易于集成,已经逐渐成为
               等,通过三维(3D)培养技术构建的、具有组织特性                         LOC  中的重要组成。Asif 等       [20]  在  LOC  内部集成了
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