Page 176 - 《水产学报》2025年第6期
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梅静,等                                                                  水产学报, 2025, 49(6): 069615

              范,并按照西南大学伦理委员会制定的规章制                             的  20  只蚌平均放入      2  个只含有    10 L  曝气水的
              度执行。                                             水族箱中。一个水族箱作为对照组继续保持水

                                                               温为   23 °C (T1-C、T2-C  和  T3-C),另一个水族
              1.2    养殖水体理化性质的测定
                                                               箱作为实验组进行        33 °C  的高温处理    (T1-E、T2-E
                   将风干后的       3  种紫色土    S1、S2、S3 (土粒
                                                               和  T3-E),分别在     0、6  和  12 h  采集  3  种养殖系
              直径 < 2 cm) 作为底泥,放置于            9  个水族箱中
                                                               统的对照组和实验组三角帆蚌,检测血淋巴抗
              (圆柱体水族箱底面直径             50 cm、高    1.5 m,参
                                                               氧化酶活性和肝胰腺免疫相关基因的表达。

              照  Nimrat 等  [23]  的方法,以土水体积比         1∶5  的
              比例进行覆水,土层厚              20 cm,覆水    100 cm),     1.4    血淋巴采集及酶活性指标的测定
              以  3  种土壤底泥为对照设置           3  种养殖系统     (T1、         每个实验组和对照组取             3  只活体蚌,打开
              T2、T3),每种养殖系统设置             3  个平行。在每个           蚌壳,用预冷的        1 mL  注射器从心脏抽取血淋巴,
              水族箱的水表层下          50 cm  处使用吊网吊养        50  只    于冰上放置      30 min  后  4 °C、3 500 r/min  离心  10
              三角帆蚌,每天饲喂            2  次  (将三角帆蚌提出放             min,收集上清液,放入−80 °C          冰箱中保存备用。
              入  5.6×10  个/mL  的小球藻液中浸泡          1 h),养殖       血淋巴碱性磷酸酶          (AKP)、SOD、CAT、溶菌
                       5
              28 d,养殖过程中不间断充氧,温度控制在                            酶  (LZM)活性和    H O 浓度均采用由上海优选生
                                                                                  2
                                                                                2
              (23.0 ± 1.0) °C,每周换   1  次水,换水量约为        1/3。    物科技有限公司生产的商业试剂盒进行测定。

                   在  0、7、14、21    和  28 d  共  5  个时间点采集
                                                               1.5    RNA 的提取和   cDNA  的合成
              水样并测定其理化性质。参考《水化学实验指
                   [24]
                                +
              导》 ,氨氮        (NH -N) 含量的测定采用纳氏试                     利用   TRIzol 法提取三角帆蚌肝胰腺的总
                                4
              剂光度法,亚硝态氮            (NO -N) 含量的测定采用             RNA,通过     0.1%  琼脂糖凝胶电泳测定总核糖
                                       −
                                      2
                                                −
              分子吸收分光光度法,硝态氮                (NO -N) 含量的         核酸的完整性,使用超微量分光光度计检测其
                                               3
                                                                              ®
              测定采用紫外分光光度法,TN               含量的测定采用             浓 度 。 用   Hifair   Ⅲ 1st  Strand  cDNA  Synthesis
              碱性过硫酸钾消解紫外分光光度法,TP                    和活性        SuperMix for qPCR (gDNA digester plus) [ 翌圣生
              磷  (AP) 含量的测定采用钼酸铵紫外分光光度法,                       物科技    (上海) 股份有限公司         ] 合成   cDNA。选
              化学需氧量      (COD) 的测定采用碱性高锰酸钾法,                   用基因延伸因子基因           (EF1α) 为内参基因,选取
              总硬度    (TH) 的测定采用      EDTA  络合滴定法。              免疫相关基因凋亡抑制因子                (IAP)、白细胞介

                                                               素  17 (IL-17) 与热休克蛋白      70 (HSP70) 进行实
              1.3    高温胁迫实验
                                                               时荧光定量      PCR (RT-qPCR) 的测定     (表  1)。

                   在含有不同底泥的养殖系统中对三角帆蚌
                                                               1.6    数据分析
              进行适应性养殖         28 d  后,将同种养殖系统          3  个
              平行水族箱中的三角帆蚌混合,各选取                    60  只进          以  2 −∆∆C t 法 [25]  计算基因相对表达量,用平
              行高温胁迫实验。将每种养殖系统中选取的                       60     均值±标准误      (mean ± SE) 表示。利用      GraphPad
              只三角帆蚌分为         3  个平行组,再将每个平行组                  Prism 9  软件对参数进行主成分分析            (PCA) 和图


                                                表 1    RT-qPCR  所用引物序列
                                        Tab. 1    Primer sequences used for RT-qPCR analysis
                    基因名称                     引物序列(5′-3′)                 引物长度/bp             退火温度/°C
                     gene ID              primer sequences (5′-3′)       primer length          T m
                    EF1α-F            GGAACTTTCCAGGCAGACTGTGC               23                 59.84
                    EF1α-R            TCAAAACGGGCCGCAGAAAT                  21                 60.05
                    IAP-F             ATTCCATCCAACTGCCTCAAGA                22                 56.14
                    IAP-R             GTTTCTACTGCGGAGGTGGG                  20                 58.62
                    IL-17-F           CCATCACAGATCCTCAACG                   19                 56.05
                    IL-17-R           CGCAAGTGTATCCAACAGCAA                 21                 55.82
                    HSP70-F           GGTGTGCCCCAGATTGAAGTA                 21                 60.00
                    HSP70-R           TGACACGGTTCTCTGTTT                    20                 59.62

              中国水产学会主办  sponsored by China Society of Fisheries                          https://www.china-fishery.cn
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