Page 141 - 《水产学报》2026年第04期
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4 期                毛梦琦,等:基于环境         DNA  的浙江中北部海域三疣梭子蟹时空分布                             50 卷

              层水样采集于海面以下            0.1~1.0 m;中层水样采集           梭子蟹的特异性引物和探针,并由生工生物工程                    (上
              于表层与底层之间的中部位置;底层水样采集于                            海) 股份有限公司合成。
              靠近海底但避免扰动沉积物的水层,在河口及近                                采用酚/氯仿抽提法提取三疣梭子蟹及其近缘
              岸海域采样点一般控制在距海底约                  2 m处。上述         种的基因组      DNA,以所获基因组          DNA  为模板,
              水层划分用于分析不同水层              eDNA  浓度的垂向分           通过实时荧光定量         PCR(qPCR),对初步设计的引
              布特征。                                             物及  TaqMan  探针进行特异性验证。
                   为防止样品采集与过滤过程中发生交叉污染,                         1.4    质粒标准品的构建
              过滤漏斗先用自来水清洗后,在                10%  的次氯酸钠
                                                                   使用验证成功的引物,以提取的三疣梭子蟹
              溶液中浸泡      10 min,再次用自来水充分冲洗;每
                                                               基因组   DNA  为模板,进行        PCR  扩增。扩增反应
                                                    [19]
              个样品过滤前再用娃哈哈纯净水冲洗                   1  次 。同
                                                               为  25 μL  的体系:12.5 μL Mix (已含缓冲液),9.5 μL
              时,以无菌蒸馏水作为过滤阴性对照,用于监测
                                                               ddH O,1 μL  模版  DNA,上下游引物各          1 μL。扩
                                                                  2
              采样与过滤环节的潜在污染。每个样品过滤时均
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              更换一次性手套,以避免交叉污染。使用孔径为
                                                               退火  30 s,72 ℃  延伸  1 min,35  个循环,72 ℃     终
              0.45 μm的玻璃纤维素滤膜          (海宁市德滤新材料科
                                                               延伸  5 min。扩增产物经       1.5%  琼脂糖凝胶电泳后,
              技有限公司) 进行过滤,将每个样品用铝箔纸包裹
                                                               通过  TA  克隆将目的片段插入质粒中,经蓝白斑
              后存放于     2 mL  冻存管内,速冻于−196 ℃         的液氮
                                                               筛选后测序鉴定,完成质粒标准品构建后,测定
              中 ,带回实验室后转移至−80 ℃               冰箱保存,直
                [20]
                                                               其浓度并计算拷贝数。将质粒              DNA  按  10  倍浓度
              至提取    eDNA。上述操作可有效降低样品采集与
                                                                           8
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                                                               梯度稀释(10 ~10  拷贝/μL),作为         qPCR  标准品,
              过滤过程中发生外源          DNA  污染及假阳性的风险。
                                                               构建标准曲线并计算扩增效率。
                   本次调查同步使用单船底拖网渔船“浙普渔
              43019”(船长   30 m,主机功率      184 kW) 开展作业。          1.5    实时荧光定量    PCR
              按照《海洋渔业资源调查规范》(SC/T 9403-2012)                       从浙江中北部水样中提取             eDNA  作为模板,
                   [21]
              要求 ,使用网口拉紧周长              50 m、网身拉直长度            以构建的质粒标准品绘制标准曲线,采用三疣梭
              48 m  的底拖网,以约       3 kn  的航速在各站位持续拖             子蟹特异性引物及         TaqMan  探针在   7300 Plus 实时
              网  1 h。                                          荧光定量    PCR  系统(Applied Biosystems)上进行
                   本研究未涉及实验动物操作。环境                  DNA  样     检测。20 μL    反应体系含      10 μL PCR Mix、4.9 μL
              本采集及其同步底拖网调查,均为常规渔业资源                            ddH O、4 μL  模板   DNA、上/下游引物各          0.4 μL
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              调查活动,符合我国现行野生动物保护法律、法                            及  0.3 μL TaqMan  探针;阴性对照以       ddH O 2  替代
              规及行业技术规范要求,未对目标物种及其栖息                            模板  DNA。热循环参数:50 ℃ 2 min(UNG            酶消
              环境造成明显干扰。                                        化);95 ℃ 2 min(酶激活);94 ℃ 3 s、60 ℃
                                                               30 s,40  个循环  [24] 。每轮扩增均设阴性对照,结
               1.2    环境  DNA  提取
                                                               果均未检出扩增信号,表明无外源                DNA  污染。
                   使用  DNeasy Blood & Tissue kit (Qiagen,Hilden,
                                                                1.6    数据分析
              德 国 ) 从 保 存 的 滤 膜 中 进 行 环 境     DNA  提 取  [22] ,
              DNA  提取后用     100 μL  的  AE  缓冲液洗脱,再使                利用   ArcGIS 10.4.1  软件对  29  个采样站点的
              用  OneStep PCR Inhibitor Removal 试剂盒  (ZYMO      三疣梭子蟹      eDNA  浓度进行可视化分析。鉴于环
              Research,美国) 去除抑制剂        [23] 。提取的   DNA  存     境  DNA  浓度数据通常呈现高度偏态分布且包含大
              储于−80 ℃    冰箱备用。                                 量零值,为降低极端值对分析结果的影响并增强
                                                               不同站位间的可比性,对              eDNA  浓度数据进行
               1.3    三疣梭子蟹特异性引物和           TaqMan  探针的
                                                               ln(eDNA+1) 转换后用于空间分布展示与统计分析。
              初步设计及验证
                                                               其中  eDNA  浓度取各站位不同水层中的最大值,
                   从  NCBI 下载三疣梭子蟹及其近缘种的线粒                     以生成其水平分布图;结合             Ocean Data View 5.7.2
              体基因组全序列,利用             Primer Express 3.0.1  软件  软件绘制垂直分布剖面图,综合展示浙江中北部
              和  NCBI 在线引物设计工具,初步设计用于三疣                        海域三疣梭子蟹        eDNA  的时空分布格局。基于           R

              中国水产学会主办  sponsored by China Society of Fisheries                          https://www.china-fishery.cn
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