Page 19 - 《渔业研究》2025年第5期
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              用,以系统揭示其蛋白质修饰组特征。此外,功能                           修饰通过改变其脱氧核糖核酸(Deoxyribo nucleic
              验证常采用点突变模拟修饰状态或阻断修饰,结合                           acid,DNA)结合能力,直接影响染色体结构和毒
              免疫共沉淀、蛋白质印记、生化活性测定等手段,                           力基因的沉默与激活;TCS            和群体感应(Quorum
              深入解析关键修饰对蛋白功能的影响                 [31-32] 。最后,    sensing,QS)系统中的核心组分的磷酸化、乙酰
              通过动物或体外模型,评估修饰蛋白在宿主感染中                           化、琥珀酰化修饰,精细调节信号感知、传导及输
              的功能作用,如生物膜形成能力、细胞毒性、致死                           出,进而控制毒力因子的协同表达;转录因子的乙
              率变化等    [33]  。                                  酰化也十分常见,可通过调节              DNA  结合能力与蛋
                                                               白稳定性,精确调控下游毒力基因的表达;此外,
               2 PTMs 在病原菌致病机制中的作用
                                                               毒力因子本身也常受由乙酰化为主的                  PTMs 的调
               2.1 调控细菌毒力                                      节,从而改变活性、结构、定位或相互作用。总体
                  细菌毒力的表达受到多层面的              PTMs 网络的精         而言,PTMs 在基因组水平、信号通路水平、转录
              密调控。在水生病原菌中,不同类型的                  PTMs 在多       调控水平以及效应分子水平等多层面共同作用,构
              个调控层级上发挥作用:类核相关蛋白(Nucleoid-                      建了一套动态而精细的调控网络,实现对致病性的
              associated proteins,NAPs)的乙酰化、琥珀酰化等              多维、可逆和精细控制(表            1) 。


                                            表 1    PTMs 在水产病原菌毒力调控中的作用
                                Tab. 1    Role of PTMs in virulence regulation of aquatic bacterial pathogens
                   调控层面       修饰类型              作用机制                                菌种
                Regulatory levels  PTM types  Mechanisms of action                  Species
               类核相关蛋白         乙酰化、     改变  DNA  结合能力,             杀鱼爱德华氏菌(Edwardsiella piscicida) [34] 、
               NAPs           琥珀酰化     调控毒力基因沉默与激活                嗜水气单胞菌   [23] 、副溶血弧菌 [35] 、溶藻弧菌 [21]
               双组分系统          磷酸化      信号感知与转导,调控毒力基因表达           溶藻弧菌  [36]
               TCS
               群体感应系统         乙酰化、     调控信号分子合成酶活性,               嗜水气单胞菌   [23]
               QS             琥珀酰化     影响毒力因子表达
               转录因子           乙酰化      改变  DNA  结合能力与稳定性,         霍乱弧菌(V. cholerae) [16]
               Transcription factors   调控下游毒力基因转录
               毒力因子           乙酰化      改变结构与活性,调节毒力               海洋分枝杆菌(Mycobacterium marinum) [37] 、溶藻弧菌 [38] 、
               Virulence factors                                  拟态弧菌(V. mimicus) [13] 、铜绿假单胞菌 [39]

               2.1.1 NAPs 的  PTMs                              转录抑制,显著提高致病性与宿主细胞存活能力                   [34] 。
                  在真核生物中,组蛋白           PTMs 通过调节染色质            此研究系统揭示了细菌通过乙酰化动态调控基因组
              结构,影响多种以         DNA  为模板的生物学过程          [40] 。  稳定性和毒力的新形式,为靶向               H-NS  的抗菌策略
              尽管细菌中没有组蛋白,但存在功能类似的                    NAPs,     提供理论基础。
              例如核结构蛋白(Histone-like nucleoid structuring            虽然在水产病原菌中关于           NAPs 修饰的直接研
              protein,H-NS) 、类组蛋白     HU(Histone-like protein  究仍有限,但来自模式菌的研究为理解其功能提供
              HU)等。这些蛋白通过与            DNA  结合来调节染色体            了重要借鉴。例如,大肠杆菌(Escherichia coli)
              的结构和基因表达,在细菌的环境适应性与毒力调                           HUβ  蛋白的   K86  可改变  DNA  结合特性,使其对短
              控中发挥核心作用         [41] 。目前已有研究表明,NAPs             片段  DNA  的亲和力降低而对长片段增强,从而调
              也是   PTMs 的重要靶点,其修饰状态可改变                DNA      控基因表达      [43] ;结核分枝杆菌(Mycobacterium
              结合能力,进而调控毒力基因的沉默与激活                   [34, 42] 。  tuberculosis)中同源位点的乙酰化亦降低其             DNA
                  在杀鱼爱德华氏菌中,H-NS             蛋白通过抑制            亲和力,诱导染色体解压缩并激活毒力基因表达,
              Ⅲ型与Ⅵ型分泌系统(Type Ⅲ/Ⅵ secretion system,             促进慢性感染的建立         [44-45] 。此外,大规模蛋白质组
              T3SS/T6SS)的表达,沉默水平转移基因,从而维                       学分析表明,嗜水气单胞菌             [23] 、副溶血弧菌    [35] 、
              持基因组稳定性。H-NS          蛋白的    K120  乙酰化会中         溶藻弧菌    [21]  等水产病原菌的类组蛋白         HU  存在广
              和正电荷,削弱        H-NS  与  DNA  的结合能力,释放            泛的乙酰化与琥珀酰化修饰,修饰位点集中于
              启动子区域,使核糖核酸(Ribonucleic acid,RNA)                DNA 结合域(如       K3、K18) ,可能通过电荷中和
              聚合酶得以启动转录,从而解除对                 T3SS/T6SS  的     (乙酰化)或电荷反转(琥珀酰化)削弱与                     DNA
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