Page 104 - 《水产学报》2023年第1期
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陶彬彬,等 水产学报, 2023, 47(1): 019107
但该方法获得的细胞悬液中混有其他类型的细胞, 鱼类干细胞技术 (包括生殖干细胞分离、培养、诱
精原干细胞比例较低,寻找精原干细胞的特异 导和移植等技术) 与基因编辑、分子设计、性别控
标记有望实现制备高纯度的精原干细胞悬液。 制和生殖开关等技术相结合,充分利用鱼类体外
Ichida 等 [94] 报道了一种鲑鳟类 A 型精原干细胞的 受精和发育的特点,未来有望开辟养殖鱼类优良
特异抗体 (Alexa flour 488-conjugated antibody No. 种质创制的“试管配子”与“试管育种”新途径,实
95),有望结合流式细胞分选技术用于 A 型精原干 现养殖鱼类优良种质的自由设计与高效精准定制。
细胞的高效特异分选。建立成熟的鱼类生殖干细
胞体外培养技术对于实现高效的鱼类生殖细胞移 (作者声明本文无实际或潜在的利益冲突)
植十分重要。Hong 等 [95] 建立了稳定培养的青鳉精
原干细胞系,可体外诱导产生精子。青鳉原始生
参考文献 (References):
殖细胞可实现体外短期培养 [45, 96] ,青鳉囊胚细胞
[ 1 ] Robles V, Riesco M F, Psenicka M, et al. Biology of
[97]
移植实现了种内生殖细胞的完全置换 。中华乌
teleost primordial germ cells (PGCs) and spermatogo-
塘鳢 (Bostrychus sinensis) 中建立了 3D 培养体系,
nia: biotechnological applications[J]. Aquaculture,
[98]
可诱导精原干细胞分化,产生可育精子 。马口鱼
2017, 472: 4-20.
(Opsariichthys bidens) 中已建立长期稳定培养的精
[ 2 ] Xu L, Zhao M L, Ryu J H, et al. Reproductive sterility
[99]
原干细胞系,可体外诱导产生精子 。Sun 等 [100]
in aquaculture: A review of induction methods and an
成功富集培养出黄鳝雌性生殖干细胞、间性生殖
emerging approach with application to Pacific Northw-
干细胞和雄性生殖干细胞,进一步将分离培养出
的雌性生殖干细胞移植到剔除原始生殖细胞的斑 est finfish species[J]. Reviews in Aquaculture, 2023,
马鱼中,获得性腺中嵌合黄鳝生殖细胞的斑马鱼。 15(1): 220-241.
最近,Zhang 等 [92] 将基因编辑后的稀有鮈鲫精原 [ 3 ] Braat A K, Zandbergen T, Van De Water S, et al. Char-
干细胞移植到剔除内源生殖细胞的斑马鱼体内, acterization of zebrafish primordial germ cells: morpho-
利用斑马鱼获得了基因编辑的稀有鮈鲫精子。生 logy and early distribution of vasa RNA[J]. Develop-
殖干细胞移植技术与基因编辑技术相结合,是养 mental Dynamics, 1999, 216(2): 153-167.
殖鱼类优良种质精准创制亟待发展的方向之一。 [ 4 ] Marlow F. Primordial germ cell specification and
migration[J]. F1000Research, 2015, 4: 1462.
8 总结与展望 [ 5 ] Yoon C, Kawakami K, Hopkins N. Zebrafish vasa
homologue RNA is localized to the cleavage planes of
生殖是鱼类优良品种培育和扩群应用的基础,
2- and 4-cell-stage embryos and is expressed in the
原始生殖细胞作为生殖细胞的祖先细胞决定着鱼
primordial germ cells[J]. Development, 1997, 124(16):
类生殖发育的起始。自 25 年前鱼类首个原始生殖
3157-3165.
细胞标记基因鉴定以来,模式鱼 (斑马鱼和青鳉)
[ 6 ] Raz E. Primordial germ-cell development: the zebrafish
在理解鱼类原始生殖细胞发育调控机制发挥了关
键作用,鉴于模式鱼在研究原始生殖细胞发育方 perspective[J]. Nature Reviews Genetics, 2003, 4(9):
向的诸多优势,未来仍将是鱼类原始生殖细胞发 690-700.
育机制探索的重要模型,并将在鱼类原始生殖细 [ 7 ] Shinomiya A, Tanaka M, Kobayashi T, et al. The vasa-
胞特化、迁移或维持机制研究及调控原始生殖细 like gene, olvas, identifies the migration path of primor-
胞发育的新因子挖掘及养殖鱼类育种实践中发挥 dial germ cells during embryonic body formation stage
重要作用。尤其是对水产种业而言,基于原始生 in the medaka, Oryzias latipes[J]. Development,
殖细胞精准操作等生殖开关技术不仅是创制养殖 Growth & Differentiation, 2000, 42(4): 317-326.
鱼类优良种质的重要途径之一,而且,将为鱼类 [ 8 ] Cao M X, Yang Y H, Xu H Y, et al. Germ cell specific
遗传改良新品种的产业化及其知识产权的有效保 expression of Vasa in rare minnow, Gobiocypris
护提供技术保障,是水产种业高质量健康发展亟 rarus[J]. Comparative Biochemistry and Physiology
待突破的关键技术之一。 Part A:Molecular & Integrative Physiology, 2012,
可以预见,随着越来越多的养殖鱼类功能基 162(3): 163-170.
因组的系统解析和基因编辑技术的迅猛发展,将 [ 9 ] Yoshizaki G, Sakatani S, Tominaga H, et al. Cloning
https://www.china-fishery.cn 中国水产学会主办 sponsored by China Society of Fisheries
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